Ni-Agarose His标签蛋白纯化试剂盒（包涵体蛋白）说明书

6×His-Tagged Protein Purification Kit 

 目录号：  K0893   

保    存：  蛋白酶抑制剂混合物，-20℃；  其它组分，2-8℃。 

组分说明 

Cat.No.             K0893         K0893A

Volume              2ml            5ml

Ni-Agarose 填料      2ml            5ml

细菌裂解液          25ml           65ml

尿素                145g           365g

1MTris（pH7.9）       ml            15ml

1M  咪唑            25ml           65ml

3M 氯化钠          50ml          125ml

蛋白酶抑制剂混合物   0.3ml          0.7ml

亲和柱空柱           1个(6ml)      1 个 (12ml)

产品简介

      该镍柱纯化系统对6×His-tag 蛋白具有显著特异吸附能力，能够高效一步纯化带有 6 个

组氨酸亲和标签的蛋白。该系统具有4 个Ni2+ 螯合位点，较只有3个螯合位点的Ni-IDA 结合

Ni2+更为牢固，有效防止纯化过程中Ni2+脱落且增强对 His 标签蛋白的结合能力，提高纯化

效率。较高的基团密度，大大提高了蛋白载量。该系统在天然或变性条件下，对来 源于各种表

达系统（如杆状病毒，哺乳细胞，酵母以及细菌）中的His 标签蛋白，均有很好的纯化效果。

本产品已螯合镍离子，可直接用于包涵体蛋白的纯化，使用方便，快捷。支 持 物： CL-6B

琼脂糖凝胶

载量：20-30mgHis标签蛋白/ml 填料

粒径：50-160μm

注意事项 

1. 在纯化之前采用电泳检测蛋白的可溶性，本试剂盒只适合于包涵体蛋白的纯化，如需纯化

可溶性蛋白，请选择我公司的可溶性蛋白纯化试剂盒，货号为K0009

2. 缓冲液中不建议使用 β-巯基乙醇、 DTT 和  EDTA。

3. 整个纯化过程中切忌凝胶脱水变干。

4. 为提高纯化效率，首先确定BindingBuffer 和  ElutionBuffer 中咪唑的+*佳使用浓度。必

要时可以使用线性或梯度浓度的咪唑（10-500mM）洗脱蛋白，并通过SDS-PAGE 或

WesternBlotting 来检测目的蛋白的纯度。

5. 请使用高纯度的试剂配制缓冲液，并通过0.22µm 或者0.45µm 过滤器过滤。为避免柱子被

堵塞，建议将裂解液进行离心，或者使用0.22µm 或者0.45µm 过滤器过滤。

6. 柱再生时，保证每步洗完后都要用足够的去离子水冲洗至中性。

7. 如果有些蛋白采用尿素的溶解效果不好，可以采用盐酸胍进行溶解。

操作步骤 

组装层析柱 

  1. 将填料混匀后加入层析柱，室温静置10 分钟，待凝胶与溶液分层后，把底部的出液口打开，让乙醇通过重力作用缓慢流出。

注意：（1）填料的上层是乙醇保护层，将填料和乙醇一起混匀，以每ml填料纯化20-30mgHis

标签蛋白计算，取需要的体积的填料与乙醇的混合液加入层析柱。

（2）如果乙醇不流出，可以给柱子一个外力，例如用大拇指对柱口轻轻按压一下，迫使乙醇流出。

（3）本实验都是通过重力作用使溶液流出。

  2. 向装填好的柱中加入5 倍柱体积的去离子水将乙醇冲洗干净后，再用8 倍柱体积的

Binding Buffer平衡柱子，平衡结束后即可上样。

注意：柱体积指的是填料的体积。

包涵体蛋白的纯化（BindingBuffer和ElutionBuffer配方详见附表2） 

1.  收集菌体后，每100mg菌体（湿重）加入2 ml细菌裂解液（每1ml 细菌裂解液中请预先加

入10μl 蛋白酶抑制剂混合物），如有需要可以超声裂解菌体。

注意：（1） 当提取物粘度高或提取蛋白为包涵体时，建议加入DNaseI和Lysozyme。每1ml

细菌裂解液中加入1μlDNaseI（1,000U/ml），2μlLysozyme（50mg/ml），DNaseI和

Lysozyme可单独从我公司购买，货号：Lysozyme(#YJ0887)、 DNaseI(#YJ2090A)，如使用其

它公司产品，请按照相应说明书操作。

（2）超声过程中保持菌液处于冰浴中，超声条件依赖于所使用的超声仪功率，探头种类，容器

的大小形状，需实验中自己摸索，应避免连续超声导致的大量产热，可分成短时间，多次超

声，通过一定的间隔时间避免溶液过热。终以菌液变清即可。

2.   10000×g，4℃离心15分钟，分离上清和沉淀，并收集沉淀。

3.   将沉淀重悬于Binding Buffer中，尽量混匀使包涵体充分溶解。

4.   10,000×g离心20分钟，收集上清。

     注意：建议将离心后的上清以孔径为0.22µm或者0.45 μm的滤膜过滤。

5.   将上清负载上柱，流速为10倍柱体积/小时，收集流穿液。

     注意：（1）本试剂盒中附带有一块筛板，使用时先将筛板加至填料的上层，再将处理好

的上清负载上柱。该筛板可用于杂质较多的蛋白的过滤，防止过多的杂蛋白堵塞柱子，但是筛

板放入柱子后不易取出。

（2）通过控制加入的上清（菌体裂解液）的速度来控制流速。

6.   使用15倍柱体积的Binding Buffer冲洗柱子，洗去杂蛋白。

7.   使用适量Elution Buffer洗脱，收集洗脱峰。

注意：通过蛋白监测仪监测，洗脱峰可以分管收集，每1ml收集1管。

8.    洗脱后，依次使用5倍柱体积的Binding Buffer，5倍柱体积的去离子水洗涤柱子，再用3倍

柱体积的20%乙醇平衡（乙醇要将填料浸没），4℃保存。 

       注意：（1）在纯化包涵体蛋白时，所有缓冲液均含有变性剂，可以降低BindingBuffer中的咪唑浓度（比5mM更低）。洗脱时，若蛋白在较高pH下洗脱失败，可以选用低pH缓冲液作

为洗脱缓冲液（pH6.5，pH5.9或pH4.5）。 

（2）如果是分段梯度洗脱，大洗脱缓冲液中咪唑浓度未达到500mM，则使用浓度为500mM

的咪唑进行洗脱10倍柱体积后，再进行第8步的操作。

柱再生 

   当填料使用多次后，结合效率会有所下降（表现为流速变慢或填料失去蓝绿色），可以用以

下方法再生，提高填料的使用寿命和蛋白质的结合效率。

 1. 使用2 倍柱体积的6M  盐酸胍冲洗后，使用3 倍柱体积的去离子水冲洗。

 2. 使用1 倍柱体积2% SDS冲洗。

 3. 依次使用1 倍柱体积的25%、50%、75%和5 倍柱体积100%乙醇冲洗，再依次使用 1 倍柱

体积的75%、50%、25%的乙醇冲洗。

 4. 使用1 倍柱体积的去离子水冲洗。

 5. 使用5 倍柱体积含      50 mM EDTA 缓冲液（PH8.0）冲洗。

 6. 使用3 倍柱体积去离子水，3 倍柱体积20%乙醇冲洗。

 7. 4°C 保存。

 8. 再次使用前，需首先使用10 倍柱体积去离子水冲洗，然后使用5 个柱体积的50 mM NiSO4

再生，3 个柱体积的Binding Buffer   平衡。

1: 蛋白分子量标准  

（分子量由大到小分别为：90/66/45/35/27/20kDa）

2: 全菌裂解液

3: 流穿收集液

4: 洗脱收集液

 附表 

    

                                         附表  1. 包涵体蛋白纯化缓冲液配方

成分         Tris-HCl（PH7.9）   咪唑       NaCl      尿素

BindingBuffer      20mM          5mM       0.5M      8M

ElutionBuffer      20mM          500mM      0.5M      8M

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