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微量辅酶ⅠNAD(H)含量测定常见问题
点击次数:1918 更新时间:2021-06-23

                                                           规格:100管/48样

辅酶NAD(H)含量测定试剂盒说明书

微量法

正式测定前务必取 2-3个预期差异较大的样本做预测定

测定意义

辅酶 NAD(H)Ⅰ广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中,NAD+是糖酵解(EMP)和三羧酸循环(TCA)的主要氢受体,生成的 NADH 经呼吸电子链(ETC)传递把电子交给氧,在合成 ATP 的同时,形成大量的 ROS,同时 NADH 再生为 NAD+。糖、脂、蛋白质三大代谢物质分解中的氧化反应绝大部分通过这一体系完成。NAD(H)含量和 NADH/NAD+比值的高低可用于评价糖酵解和TCA循环的强弱。较高的 NAD(H)NADH/NAD+比值说明细胞呼吸耗氧量较高,处于过氧化状态。此外,NADH/NAD+比值升高也可抑制糖酵解和TCA循环。另外,NAD+降解产物对细胞信号传导、代谢和基因表达等具有重要的调控作用。

测定原理

分别用酸性和碱性提取液提取样品中NAD+NADHNADH通过PMS的递氢作用,还原氧化型噻唑蓝(MTT)为甲瓒,在570nm下检测吸光值;而NAD+可被乙醇脱氢酶还原为NADH,进一步采用MTT还原法检测。

需自备的仪器和用品

可见分光光度计/酶标仪、台式离心机、移液器、微量石英比色皿/96 孔板、研钵、冰和蒸馏水。

试剂的组成和配制

酸性提取液:液体 50mL×1 瓶,4℃保存;

碱性提取液:液体 50mL×1 瓶,4℃保存;

试剂一:液体 10 mL×1 瓶,4℃保存;

试剂二:液体 3 mL×1 瓶,4℃保存;

试剂三:粉剂×1 瓶,-20 ℃保存,用时加入3mL蒸馏水,混匀,用不完的试剂4℃保存一周;

试剂四:粉剂×1 瓶,4 ℃保存,用时加入3mL蒸馏水,混匀,用不完的试剂4℃保存一周;

试剂五:液体 3.6mL×1 瓶,4 ℃保存;

试剂六:液体 30mL×1 瓶,4 ℃保存;

试剂七:液体 50mL×1 瓶,4 ℃保存。

NAD+NADH的提取

1  血清(浆)中 NAD+NADH的提取

NAD+的提取:按照血清(浆)体积(mL):酸性提取液体积(mL)为15~10的比例(建议取约0.1mL血清(浆),加入1mL酸性提取液),95℃水浴 5min(盖紧,以防止水分散失);

冰浴中冷却后,10000g 4 ℃离心 10min;取 500μL 上清液,加入500μL碱性提取液使之中和,混匀,10000g 4 ℃离心 10min,取上清,置冰上待测。

NADH 的提取:按照血清(浆)体积(mL):碱性提取液体积(mL)为 15~10 的比例(建

议取约0.1mL 血清(浆),加入 1mL 碱性提取液),95℃水浴 5min(盖紧,以防止水分散失);冰浴中冷却后,10000g 4 ℃离心 10min;取 500μL 上清液,加入 500μL 酸性提取液使之中和,混匀,10000g 4 ℃离心 10min,取上清,置冰上待测。

2  组织中 NAD+NADH 的提取:

NAD+的提取:按照组织质量(g):酸性提取液体积(mL)为15~10的比例(建议取约0.1g组织,加入1mL酸性提取液),冰浴研磨,95℃水浴5min(盖紧,以防止水分散失);冰浴中冷却后,10000g 4 ℃离心 10min;取 500μL 上清液,加入 500μL 碱性提取液使之中和,混匀,10000g 4 ℃离心 10min,取上清,置冰上待测。

NADH 的提取:按照组织质量(g):碱性提取液体积(mL)为 15~10 的比例(建议取约 0.1g组织,加入 1mL 碱性提取液),冰浴研磨,95℃水浴 5min(盖紧,以防止水分散失);冰浴中冷却后,10000g 4 ℃离心 10min;取 500μL上清液,加入 500μL 酸性提取液使之中和,混匀,10000g 4 ℃离心 10min,取上清,置冰上待测。

3  细胞或细菌中NAD+NADH的提取:

NAD+的提取:先收集细胞或细菌到离心管内,弃上清,按照细菌或细胞数量(104个):酸性提取液体积(mL)为500~10001的比例(建议500万细菌或细胞加入1mL酸性提取液),超声波破碎 1min(冰浴,强度20%或200W,超声2s,停1s),95℃水浴 5min(盖紧,以防止水分散失);冰浴中冷却后,10000g 4 ℃离心 10min;取 500μL上清液,加入500μL碱性提取液使之中和,混匀,10000g 4 ℃离心 10min,取上清,置冰上待测。

NADH 的提取:先收集细胞或细菌到离心管内,弃上清,按照细菌或细胞数量(104个):碱性提取液体积(mL)为500~10001的比例(建议500万细菌或细胞加入1mL碱性提取液),超声波破碎 1min(冰浴,强度 20%或 200W,超声2s,停1s),95℃水浴 5min(盖紧,以防止水分散失);冰浴中冷却后,10000g 4 ℃离心 10min;取 500μL 上清液,加入500μL 酸性提取液使之中和,混匀,10000g 4 ℃离心 10min,取上清,置冰上待测。

测定步骤:

1、分光光度计或酶标仪预热30min以上,调节波长至570nm,蒸馏水调零。

2、加样表(1.5mL 棕色 EP 管中按下表依次加样):

试剂名称(μL)

对照管

测定管

样本

20

20

试剂一

80

80

试剂二

30

30

试剂三

30

30

试剂四

30

30

试剂五

30

30

试剂六

200

混匀,室温避光静置 20min

试剂六

 

200

充分混匀,静置 5min 后,20000g25℃离心 5min,弃上清,沉淀中加入:

试剂七

400

400

混匀,取200μL转移至微量石英比色皿或96孔板中,570nm下读取对照吸光值A1和测定管吸光值 A2,计算△A=A2-A1

注意事项

1、如果一次性测定样本数较多,可将试剂一、二、三和四按比例配成混合液。

2、对照管和测定管的测定步骤的区别:对照管加完试剂一、二、三、四和五后必须马上加试剂六;测定管加完试剂一、二、三、四和五后必须反应 20min 后再加试剂六。

3、反应过程中注意避光。

4、由于每一个测定管需要设一个对照管,本试剂盒100管保证测48NAD+ NADH.

NAD+NADH含量的计算

a. 用微量石英比色皿测定的计算公式如下

(一)NAD+含量的计算

1、血清(浆)中 NAD+含量计算

NAD+含量(nmol/mL=[(A -0.099)×36.1×V1) ]÷(V3×V1÷V2)= 722×(A -0.099

2、组织、细菌或细胞中 NAD+含量计算

(1)按样本蛋白浓度计算

NAD+(nmol/mg prot=[(A-0.099)×36.1×V1)]÷(V1×Cpr)

=36.1×(A-0.099)÷Cpr

(2)按样本鲜重计算

NAD+(nmol/g 鲜重)= [(A-0.099)×36.1×V1)]÷(W×V1÷V2)

= 72.2×(A -0.099)÷W

(3)按细菌或细胞密度计算

NAD+(nmol/104cell=[(A -0.099)×36.1×V1)]÷(500×V1÷V2)=0.1444×(A -0.099

(二)NADH 含量的计算

1、血清(浆)中NADH含量计算

NADH 含量(nmol/mL= [(A -0.065)×24.7×V1) ]÷(V3×V1÷V2)= 494×(A -0.065

2、组织、细菌或细胞中 NADH 含量计算

(1)按样本蛋白浓度计算

NADH (nmol/mg prot= [(A-0.065)×24.7×V1) ]÷(V1×Cpr)

= 24.7×(A -0.065)÷Cpr

(2)按样本鲜重计算

NADH (nmol/g 鲜重)= [(A -0.065)×24.7×V1) ]÷(W×V1÷V2)

= 49.4×(A -0.065)÷W

(3)按细菌或细胞密度计算

NADH (nmol/104cell= [(A -0.065)×24.7×V1) ]÷(500×V1÷V2)

=0.0988×(A -0.065

V1:加入反应体系中样本体积,0.02mLV2:加入提取液体积,2mLV3:加入血清(浆)体积:0.1mLCpr:样本蛋白质浓度,mg/mLW:样本质量,g500:细胞或细菌总数,500 万。

b.96孔板测定的计算公式如下

(一)NAD+含量的计算

1、血清(浆)中 NAD+含量计算

NAD+含量(nmol/mL=[ (A -0.099)×72.2×V1) ]÷(V3×V1÷V2)= 1444×(A -0.099

2、组织、细菌或细胞中 NAD+含量计算

(1)按样本蛋白浓度计算

NAD+ (nmol/mg prot=[(A-0.099)×72.2×V1)]÷(V1×Cpr)

= 72.2×(A -0.099)÷Cpr

(2)按样本鲜重计算

NAD+ (nmol/g 鲜重)= [(A-0.099)×72.2×V1)]÷(W×V1÷V2)

= 144.4×(A -0.099)÷W

(3)按细菌或细胞密度计算

NAD+(nmol/104cell=[(A -0.099)×72.2×V1)]÷(500×V1÷V2)=0.2888×(A -0.099

(二)NADH 含量的计算

1、血清(浆)中 NADH 含量计算

NADH 含量(nmol/mL= [(A -0.065)×49.4×V1) ]÷(V3×V1÷V2)= 988×(A -0.065

2、组织、细菌或细胞中 NADH 含量计算

(1)按样本蛋白浓度计算

NADH (nmol/mg prot= [(A-0.065)×49.4×V1) ]÷(V1×Cpr)

= 49.4×(A -0.065)÷Cpr

(2)按样本鲜重计算

NADH (nmol/g 鲜重)= [(A -0.065)×49.4×V1) ]÷(W×V1÷V2)

= 98.8×(A -0.065)÷W

(3)按细菌或细胞密度计算

NADH (nmol/104cell= [(A-0.065)×49.4×V1) ]÷(500×V1÷V2)

=0.1976×(A -0.065

V1:加入反应体系中样本体积,0.02mLV2:加入提取液体积,2mLV3:加入血清(浆)体积:0.1mLCpr:样本蛋白质浓度,mg/mLW:样本质量,g500:细胞或细菌总数,500 万。

注意:最di检测限为 1nmol/mL 或 或 1nmol/g  鲜重 或 或 0.01nmol/mg prot

实验代做服务:

 

免疫组化IHC染色实验服务

细胞、组织TUNEL凋亡染色实验服务

试剂盒免费代检测

实验室代做实验项目

 

透射电镜服务实验服务

石蜡/冰冻切片TUNEL凋亡

核仁组成区嗜银-AGNOR染色实验服务

免疫共沉淀(CHIRP)实验

RNA结合蛋白免疫沉淀(RIP)实验代做

酶联免疫(ELISA)技术服务

鸡传染性法氏囊病病毒VP2抗体诊断试剂盒

喹诺酮类快速检测试剂盒

组织芯片/微阵列定制技术服务

 

染色质免疫沉淀分析(CLIP)实验服务

 

多因子液相芯片技术(Luminex)实验

免疫细胞化学ICC实验服务

ATP/ADP检测实验服务

蛋白双向(2-D)电泳实验服务

蛋白相互作用分析

碱性磷酸酶染色实验服务

PKC活性检测实验

非标定量实验

(Label-free)

 

DIGE技术实验服务

端粒酶活性检测实验

细胞生长曲线的测定

扫描电镜服务

NF-KB p65活性检测实验

 

慢病毒包装实验服务

 

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