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口蹄疫病毒通用型(FMDV-U)核酸检测试剂盒(荧光 RT-PCR 法)
点击次数:201 更新时间:2024-07-15
口蹄疫病毒通用型(FMDV-U)核酸检测试剂盒(荧光 RT-PCR 法)
【产品名称】
商品名称:口蹄疫病毒通用型(FMDV-U)核酸检测试剂盒(荧光 RT-PCR 法)
【包装规格】 50T/盒
【货
号】 XC-2010
【预期用途】
本试剂盒适用于检测的扁桃体、淋巴结等组织病变部与健康部交界处组织、全血等标本中口蹄疫病毒 RNA, 适用于口蹄疫病毒感染
的辅助诊断。
【检验原理】
本试剂盒采用 TaqMan 探针法实时荧光 RT-PCR 技术,通过设计 1 对口蹄疫病毒特异性引物,结合 1 条特异性探针,用荧光 RT-PCR
技术对口蹄疫病毒核酸进行体外扩增检测, 用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。
【试剂组成】
酶液
50μL×1 管
FMDV-U 反应液
950uL×1 管
FMDV-U 阳性质控品
50μL ×1 管
阴性质控品
50μL ×1 管
备注:不同批号的试剂盒组分不宜交叉使用。
【储存条件及有效期】
-20℃±5℃, 避光保存、运输、反复冻融≤5 次, 有效期 12 个月。
【适用仪器】
ABI 系列 、安捷伦 MX3000P/3005P、Bio-Rad 等系列荧光定量 PCR 检测仪。
【标本采集】
病死或扑杀猪,取分泌物、血液、脾脏、扁桃体、肾脏和淋巴结等
【保存和运输】
上述标本短期内可保存于-20℃, 长期保存可置-70℃,但不能超过 6 个月, 标本运送应采用2~8℃冰袋运输, 严禁反复冻融。
【使用方法】
1. 样品处理(样本处理区)
1.1 样本前处理
组织样品: 每份组织分别从 3 个不同的位置称取样品约 1g, 手术剪剪碎混匀后取 0.5g于研磨器中研磨, 加入 1.5mL 生理盐水后继续
研磨,待匀浆后转至 1.5mL 灭菌离心管中, 8000rpm 离心 2min, 取上清液 100μL 于 1.5mL 灭菌离心管中; 全血样本:待血凝固后,
取血清 100μL 于 1.5mL 灭菌离心管中。
1.2
RNA 提取
推荐采用深圳市迅测生物科技有限公司生产的 RNA 提取试剂盒(离心柱提取法/磁珠法),请按照试剂盒说明书进行操作。
2. 试剂配制(试剂准备区)
根据待检测样本总数, 设所需要的 PCR 反应管管数为 N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照,每个测试反应体系配制如下表:
试剂
FMDV-U 反应液
酶液
用量(样本数为 N)
19μL
1μL
3. 加样(样本处理区)
将步骤 1 提取的 RNA、阳性质控品、阴性质控品各取 5μL, 分别加入相应的反应管中,盖好管盖,混匀,短暂离心。
4. PCR 扩增(核酸扩增区)
4.1将待检测反应管置于荧光定量 PCR 仪反应槽内;
4.2设置好通道、样品信息,反应体系设置为25μL;
荧光通道选择: 检测通道选择 CY5 检测, 淬灭通道选择 NONE, 参比荧光选 NONE。
4.3推荐循环参数设置:
步骤
循环数
温度
时间
收集荧光信号
1
1 cycle
50℃
15min
2
1 cycle
95℃
3min
3
45cycles
95℃
15sec
55℃
30sec
5. 结果分析判定
5.1 结果分析条件设定
设置 Baseline 和 Threshold: 一般直接按机器自动分析的结果分析,当曲线出现整体倾斜时,根据分析后图像调节 Baseline 的start
值(一般可在 3~15 范围内调节)、stop 值(一般可在 5~20 范围内调节),以及 Threshold 的 Value 值(上下拖动阈值线至高于阴性对照),
重新分析结果。
5.2 结果判断
阳性:检测通道 Ct 值≤38.0, 且曲线有明显的指数增长曲线。
可疑:检测通道 Ct 值>38.0, 且出现典型扩增曲线的样本建议重复试验,重复试验结果出现 Ct 值≤38.0 和典型扩增曲线者为阳性,
否则为阴性。
阴性:样本检测结果无 Ct 值且无明显的扩增曲线。
6. 质控标准
阴性质控品:无明显扩增曲线或无 Ct 值显示;
阳性质控品:扩增曲线有明显指数生长期, 且 Ct 值≤30;
以上条件应同时满足, 否则实验视为无效。
7. 检测方法的局限性
样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关;
样本提取过程中没有控制好交叉污染,会出现假阳性结果;
阳性对照、扩增产物泄漏, 会导致假阳性结果;
病原体在流行过程中基因突变、重组,会导致假阴性结果;
不同的提取方法存在提取效率差异,会导致假阴性结果;
试剂运输,保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降,出现假阴性或定量检测不准确的结果;
本检测结果仅供参考, 如须确诊请结合临床症状以及其他检测手段。
【注意事项】
所有操作严格按照说明书进行;
试剂盒内各种组分使用前应自然融化, 完全混匀并短暂离心;
反应液应避光保存;
反应中管盖需盖紧;
使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服;
样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行, 以免交叉污染;
实验完毕后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器;
试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。

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